東北大學的鄭文利博士早在20世紀末就進行了大鼠皮膚凍干的實驗研究。取活大鼠脫頸處死后，立即用電動去毛刀去其腹部鼠毛，剝離皮膚，除去皮下脂肪層、血管及殘留物，用蒸餾水沖洗干凈，制成不同尺寸的皮片，再用生理鹽水沖洗數次備用。將制備好的大鼠皮放在速率降溫儀中，以-5℃/min、-l5℃/min、-30℃/min三種不同速率降溫至-30℃。將三種不同降溫速率預凍的大鼠皮，分別放入小型凍干機中抽真空，30min后壓力穩定在120Pa,不主動加熱，連續干燥34h后關機，充氮氣后取出，用無菌塑料袋封裝后，放在干燥器內保存。

將以不同預凍速率凍干的大鼠皮膚，經10%福爾馬林固定，石蠟包埋制片，進行病理切片，切片厚度4～5μm,HE染色，再顯微鏡觀察。新鮮大鼠皮組織切片如圖5-8所示，以5℃/min速率預凍并凍干大鼠皮組織切片如圖5-9所示。從圖中可以看出凍干皮組織與新鮮皮組織相本相同，未見細胞破裂、上皮脫離、組織褶皺、細胞變性和細胞間隙增寬等異常，說明凍干皮組織結構未發生變化。其他速率預凍并凍干后的結果基本一致。

凍干大鼠皮角質細胞間隙脂流動性的電子自旋共振(ESR)測定：選  用5-噁唑氮氧自由基硬質酸(5-DSA)作為自旋轉標記物，將新鮮的和  三種不同預凍速率的凍干大鼠皮角質層樣品泡在濃度為1×10-4mol/L  的5-DSA緩沖液(pH=7.4)中12h，保溫20℃，然后取出淋洗干凈，37℃烘箱干燥1h，分別放進電子自旋共振波譜儀樣品管內，再置于腔中。ESR測定條件：掃描寬度200G，接收增益3.2×104，時間常數20.48ms，微波功率5.02mW，掃描時間83.888s，調制頻率  25.000kHz，調制幅度0.947G。經ESR波譜分析得知，三種不同凍  結速率預凍的凍干大鼠皮與新鮮大鼠皮各系數相比無顯著差異，說明  凍干大鼠皮膚未引起表皮細胞間脂質結構的變化，大鼠表皮角質細胞  間脂質排列的有序性沒有改變，流動性沒有增加。

表5-11中的數據表明，在滲透9、10h、12h時，凍干皮膚與正常皮膚對藥物尼莫地的滲透量無顯若性差異。可見，凍干的大鼠皮膚能夠滿足藥理的實驗要求，可用做透皮制的實驗研究，可以長期貯存備用。